Geleneksel Türk İçeceği Hardaliyenin Biyoaktif Bileşenleri ile Antioksidan ve Antimikrobiyal Aktivitelerinin İncelenmesi
PDF
Atıf
Paylaş
Talep
P: 569-577
Ekim 2022

Geleneksel Türk İçeceği Hardaliyenin Biyoaktif Bileşenleri ile Antioksidan ve Antimikrobiyal Aktivitelerinin İncelenmesi

Bezmialem Science 2022;10(5):569-577
Bilgi mevcut değil.
Bilgi mevcut değil
Alındığı Tarih: 25.05.2021
Kabul Tarihi: 02.09.2021
Yayın Tarihi: 26.10.2022
PDF
Atıf
Paylaş
Talep

ÖZET

Amaç:

Çalışmamızda farklı üreticiler tarafından ticari olarak satışa sunulan geleneksel Türk içeceği hardaliye ürünlerinin (H1 ve H2) kimyasal analizinin yapılması, antioksidan ve antimikrobiyal aktivitelerinin incelenmesi amaçlanmıştır.

Yöntemler:

Hardaliye ürünlerinde (H1 ve H2) antioksidan aktivite 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) serbest radikal giderim aktivitesiyle, organik asit ve fenolik bileşenler sıvı kromatografi-yüksek çözünürlüklü kütle spektrometre [liquid chromatography-high resolution mass spectrometry (LC-HR/MS)] yöntemiyle, antimikrobiyal etkinlik sıvı mikrodilüsyon yöntemleriyle araştırılmıştır.

Bulgular: LC-HR/MS yöntemiyle hardaliye örneklerinin kimyasal analizi yapılarak organik asitlerden askorbik asit ve fumarik asit saptanmıştır. Askorbik asit konsantrasyonları H1 ve H2’de sırasıyla 21,295 mg/L ve 26,84 mg/L iken, H1’de fumarik asit konsantrasyonları 59,55 mg/L, H2’de ise 224,562 mg/L olarak saptanmıştır. H1’de konsantrasyonu en yüksek fenolik bileşen resveratrol (44,57 mg/L) iken, H2’de konsantrasyonu en yüksek fenolik bileşenin p-kumarik asit (31,87 mg/L) olduğu gözlenmiştir. Antioksidan etkinlik açısından hardaliye örneklerinin diphenyl-2-picrylhydrazyl serbest radikal giderim aktivitesinin H1 ve H2’de sırasıyla %2,07±0,004 ve %2,49±0,004 olduğu tespit edilmiştir. Hardaliye örneklerinin test edilen mikroorganizmalardan sadece S. epidermidis ATCC 49461 kökenine karşı inhibitör etki [H1 minimal inhibisyon konsantrasyonu (MİK): 15,625 μg/mL, H2 MİK: <3,9 μg/mL] gösterdikleri saptanmıştır.

Sonuç:

Çalışmamızda ticari olarak üretilen iki farklı hardaliyenin literatürdeki verilere kıyasla fenolik bileşenleri oldukça düşük konsantrasyonlarda içerdiği saptanmış olup, bu sebeple antioksidan aktivite göstermediği düşünülmüştür.

References

1
Fraga CG, Croft KD, Kennedy DO, Tomás-Barberán FA. The effects of polyphenols and other bioactives on human health. Food Funct 2019;10:514-28.
2
Cosme F, Pinto T, Vilela A. Phenolic Compounds and Antioxidant Activity in Grape Juices: A Chemical and Sensory View. Beverages 2018;4:22.
3
Xia EQ, Deng GF, Guo YJ, Li HB. Biological activities of polyphenols from grapes. Int J Mol Sci 2010;11:622-46. 
4
Coskun F. A Traditional Turkish Fermented Non-Alcoholic Grape-Based Beverage, “Hardaliye”. Beverages 2017;3:2.
5
Arici M, Coskun F. Hardaliye: Fermented grape juice as a traditional Turkish beverage. Food Microbiol 2001;18:417-21.
6
Blois MS. Antioxidant determination by the use of a stable free radical. Nature 1958;181:1199-200.
7
Cifuentes A. Food analysis and foodomics. J Chromatogr A 2009;1216:7109. 
8
Cifuentes A. Food Analysis: Present, Future, and Foodomics. ISRN Anal Chem 2012;2012:1-16.
9
Fiehn O. Metabolomics--the link between genotypes and phenotypes. Plant Mol Biol 2002;48:155-71.
10
Villas-Bôas SG, Mas S, Akesson M, Smedsgaard J, Nielsen J. Mass spectrometry in metabolome analysis. Mass Spectrom Rev 2005;24:613-46. 
11
Toaldo IM, Cruz FA, Alves Tde L, de Gois JS, Borges DL, Cunha HP, et al. Bioactive potential of Vitis labrusca L. grape juices from the Southern Region of Brazil: phenolic and elemental composition and effect on lipid peroxidation in healthy subjects. Food Chem 2015;173:527-35.
12
Faikoğlu F, Yavaş H, Gürbüz O, İstek N. Geleneksel içeceğimiz hardaliyenin fenolik bileşenlerinin araştırılması. J  Food Sci Technol 2016;16:16-23.
13
Silva GG, Dutra MDCP, de Oliveira JB, Rybka ACP, Pereira GE, Dos Santos Lima M. Processing methods with heat increases bioactive phenolic compounds and antioxidant activity in grape juices. J Food Biochem 2019;43:e12732.
14
Amoutzopoulos B, Löker GB, Samur G, Cevikkalp SA, Yaman M, Köse T, et al. Effects of a traditional fermented grape-based drink ‘Hardaliye’ on antioxidant status of healthy adults: a randomized controlled clinical trial. J Sci Food Agric 2013;93:3604-10.
15
Balea ŞS, Pârvu AE, Pârvu M, Vlase L, Dehelean CA, Pop TI. Antioxidant, Anti-Inflammatory and Antiproliferative Effects of the Vitis vinifera L. var. Fetească Neagră and Pinot Noir Pomace Extracts. Front Pharmacol 2020;11:990.
16
Ilıkkan KO, Doğanlar O, Doğanlar ZB, Mimiroğlu ZA, Mimiroğlu AS. Anticancer activity of the “Hardaliye” on HT-29 Cell Line and proliferative activity on CF-1 cell line: Apoptosis and Antioxidant pathway responsive gene expressions. Integr Mol Med 2017;4:1-8.
17
Cazarin CBB, Correa LC, Silva JK, Batista AG, Furlan CPB, Biasoto ACT, et al. Tropical Isabella grape juices: Bioactive compounds and antioxidant power depends on harvest season. J Food Eng 2013;3:64-70.
18
Nile SH, Kim SH, Ko EY, Park SW. Polyphenolic contents and antioxidant properties of different grape (V. vinifera, V. labrusca, and V. hybrid) cultivars. Biomed Res Int 2013;2013:718065.
19
Gündüz GT, Korkmaz A, Solak E, Sözbir HD. Antimicrobial, Antioxidant Activities and Total Phenolic Contents of the Traditional Turkish Beverages Produced by Using Grapes. TURJAF 2019;7(Suppl 1):119-25.
20
Pacier C, Martirosyan DM. Vitamin C: Optimal dosages, supplementation and use in disease prevention. Funct Food Health Dis 2015;5:89-107.
21
Derradji-Benmeziane F, Djamai R, Cadot Y. Antioxidant capacity, total phenolic, carotenoid, and vitamin C contents of five table grape varieties from Algeria and their correlations. J Int Sci Vigne Vin 2014;48:153-62.
22
Lee SK, Kader AA. Preharvest and postharvest factors influencing vitamin C content of horticultural crops. Postharvest Biol Technol 2000;20:207-20.
23
Sharique A, Beigh SH. Ascorbic acid, carotenoids, total phenolic content and antioxidant activity of various genotypes of Brassica oleracea encephala. J Med Biol Sci 2009;3:1-8.
24
 Park JS, Ha JW. Ultrasound treatment combined with fumaric acid for inactivating food-borne pathogens in apple juice and its mechanisms. Food Microbiol 2019;84:103277.
25
Ding Y, Li S, Dou C, Yu Y, Huang H. Production of fumaric acid by Rhizopus oryzae: role of carbon-nitrogen ratio. Appl Biochem Biotechnol 2011;164:1461-7.
26
Kondo N, Murata M, Isshiki K. Efficiency of sodium hypochlorite, fumaric acid, and mild heat in killing native microflora and Escherichia coli O157:H7, Salmonella typhimurium DT104, and Staphylococcus aureus attached to fresh-cut lettuce. J Food Prot 2006;69:323-9. 
27
Li J, Zhang C, Liu H, Liu J, Jiao Z. Profiles of Sugar and Organic Acid of Fruit Juices: A Comparative Study and Implication for Authentication. J Food Qual 2020;2020:1-4.
28
Gómez-Mejía E, Roriz CL, Heleno SA, Calhelha R, Dias MI, Pinela J, et al. Valorisation of black mulberry and grape seeds: Chemical characterization and bioactive potential. Food Chem 2021;337:127998.
29
Filocamo A, Bisignano C, Mandalari G, Navarra M. In Vitro Antimicrobial Activity and Effect on Biofilm Production of a White Grape Juice (Vitis vinifera) Extract. Evid Based Complement Alternat Med 2015;2015:856243. 
30
Xu Y, Burton S, Kim C, Sismour E. Phenolic compounds, antioxidant, and antibacterial properties of pomace extracts from four Virginia-grown grape varieties. Food Sci Nutr 2015;4:125-33.
31
Brown JC, Huang G, Haley-Zitlin V, Jiang X. Antibacterial effects of grape extracts on Helicobacter pylori. Appl Environ Microbiol 2009;75:848-52.
2024 ©️ Galenos Publishing House